Spectroscopie electrică în bandă largă pentru a distinge modificările Ca2+ unicelulare datorate tratamentului cu ionomicină într-o linie celulară a mușchilor scheletici, partea 2

4. Discutie

În Figura 3b, distribuția fluorescenței asociate cu vârfurile de calciu atinge un raport mai mare și se extinde mai larg după tratamentul cu Ionomicină, în concordanță cu o creștere a calciului datorată tratamentului. Pe baza acțiunii cunoscute a ionomicinei ca ionofor electroneutral, se așteaptă ca celulele să transporte rapid calciul extracelular în interior și apoi să recupereze concentrațiile citosolice normale după îndepărtarea ionomicinei [27,28]. O altă metodă comună de monitorizare a manipulării Ca2+ în interiorul celulelor este câmpurile electrice pulsate în nanosecunde (nsPES), care furnizează un mic stimulent electric pentru a genera pori în membrana plasmatică celulară, în funcție de magnitudinea și polaritatea semnalului [29]. Lucrări recente în acest domeniu pentru a analiza creșterea Ca2+ în interiorul celulelor au arătat că prezența moleculelor de zaharoză poate întârzia răspunsul de umflare asociat în mod obișnuit cu o creștere a Ca2+ intracelular; cu toate acestea, aceasta poate depinde de concentrația externă introdusă și de canalele dependente de tensiune prezente pe tipul de celulă de studiu [30,31]. Ca și în cazul studiului nostru, acestea arată că, deși au fost stabilite în crearea unui gradient pentru creșterea Ca citosolic2+, există efecte mai puțin înțelese asupra membranelor și compartimentelor mai profunde din interiorul celulei după tratament [32]. În timp ce modificarea calciului este principalul factor asociat cu tratamentul cu ionomicină, pot fi observate câteva modificări pe termen lung, inclusiv exprimarea IL-6 [33,34] sau CAI [35]; cu toate acestea, este puțin probabil ca acestea să aibă un impact pe termen scurt. Datorită naturii ritmice a funcției Ca2+ în celule, reglarea nivelurilor din citosol este controlată cu atenție de mai multe proteine ​​prin depozitare și eliberare în reticulul sarcoplasmatic. Pe baza acestui sistem crucial, se anticipează că, în timp ce distribuția generală a crescut, unele celule au revenit la fluorescență în concordanță cu valorile lor inițiale. Vârful rapid al fluorescenței și platoul însoțitor sunt în concordanță cu lucrările anterioare care observă fluxul rapid de calciu citosol înainte de o recuperare mai lentă după tratamentul cu ionomicină [36].

Cistanche poate acționa ca un amplificator anti-oboseală și rezistență, iar studiile experimentale au arătat că decoctul de Cistanche tubulosa ar putea proteja eficient hepatocitele hepatice și celulele endoteliale deteriorate la șoarecii care înotă care poartă greutatea, să regleze expresia NOS3 și să promoveze glicogenul hepatic. sinteza, exercitand astfel eficacitate anti-oboseala. Extractul de Cistanche tubulosa bogat în glicozide feniletanoide ar putea reduce semnificativ creatinkinaza serică, lactat dehidrogenază și nivelurile de lactat și ar putea crește nivelul de hemoglobină (HB) și glucoză la șoarecii ICR, iar acest lucru ar putea juca un rol anti-oboseală prin scăderea leziunilor musculare. și întârzierea îmbogățirii cu acid lactic pentru stocarea energiei la șoareci. Compusul Cistanche Tubulosa Tabletele a prelungit semnificativ timpul de înot de suportare a greutății, a crescut rezerva hepatică de glicogen și a scăzut nivelul seric de uree după exercițiu la șoareci, arătând efectul său anti-oboseală. Decoctul de Cistanchis poate îmbunătăți rezistența și accelera eliminarea oboselii la șoarecii care se antrenează și poate reduce, de asemenea, creșterea creatinkinazei serice după exercițiul de încărcare și poate menține ultrastructura mușchiului scheletic al șoarecilor normală după exercițiu, ceea ce indică faptul că are efecte. de sporire a forței fizice și anti-oboseală. De asemenea, Cistanchis a prelungit semnificativ timpul de supraviețuire al șoarecilor otrăviți cu nitriți și a sporit toleranța la hipoxie și oboseală.

Faceți clic pe oboseală cronică

【Pentru mai multe informații:george.deng@wecistanche.com / WhatsApp:8613632399501】

În mod similar, analizând măsurătorile electrice, creșterea este în concordanță cu creșterea Ca{{{0}} citosolic, iar valorile extrase sunt în concordanță cu măsurătorile anterioare ale modificărilor celulare similare. Valorile din celulele UNT sunt comparabile ca scară cu valoarea de potrivire publicată anterior de 0.22 S/m și 9.49 ε0 [21]. Comparația statistică între aceste valori pentru celulele UNT (n=51) și TRT (n=20) ​​arată că există o creștere semnificativă pentru conductivitate și o scădere semnificativă pentru permitivitate. Mărimea mică a schimbării este în concordanță cu modelul așteptat de recuperare după îndepărtarea complecșilor de transport al ionomicinei. Pentru menținerea viabilității celulare, modificarea calciului în timp ce este stabilită ar fi minimă într-o populație sănătoasă. Schimbarea observată în conductivitate și permitivitate este în concordanță cu o creștere a ionilor, făcând o distribuție mai uniformă a sarcinii în întreaga citoplasmă celulară. Sa observat mai devreme că, pe baza datelor imagistice inițiale de Ca2+, nu fiecare celulă tratată cu ionomicină susține concentrația crescută de Ca2+ intracelular, ceea ce duce la o suprapunere semnificativă între grupurile UNT și TRT. De asemenea, este important de reținut că, în timp ce această lucrare se concentrează pe modificările citosolice, homeostazia managementului calciului are loc și în reticulul sarcoplasmatic. Cu toate acestea, datorită naturii de bandă largă a măsurătorilor raportate, modificările din alte compartimente sunt surprinse într-o gamă largă de frecvențe.

Lucrarea anterioară postulează deteriorarea oxidativă a mitocondriilor și inundarea speciilor reactive de oxigen intracelular (ROS) și Ca2+ înainte de începerea apoptozei atunci când sunt expuse la stres oxidativ cronic [37]. Din punct de vedere fiziologic, există o legătură bine stabilită între nivelurile de Ca2+ din mușchiul scheletic și capacitatea de a menține echilibrul ROS și de a atenua efectele stresului oxidativ. Nu este surprinzător, modificarea spectrului observată aici de la elevația intracelulară a Ca2+, o creștere a ∆S11 în intervalul MHz, urmată de o scădere în intervalul GHz și o valoare mai puțin negativă a ∆S21 în intervalul kHz, este comparabilă. celor din celulele L6 expuse la stres oxidativ pe termen lung [21]. Lucrarea anterioară a identificat Ca2+ ca un factor cheie de diferențiere a celulelor care au experimentat expunerea la stres oxidativ, în timp ce în această lucrare, capacitatea de a diferenția calciul prin modelare arată contribuțiile mai ușoare, dar vizibile, Ca2+ le aduce la proprietăți dielectrice interne. Alternativ, munca folosind raportul de impedanță la 1 MHz la 300 kHz pentru a caracteriza opacitatea celulei individuale a arătat, de asemenea, capacitatea de a măsura modificările neutrofilelor datorate expunerii la ionofor de calciu [38]. Această lucrare are un randament mai mare și, prin urmare, dimensiunea eșantionului; cu toate acestea, se limitează la celulele sanguine și se limitează la analiza dimensiunii și opacității pentru a caracteriza populațiile studiate. Măsurând un spectru complet de valori ale frecvenței, mai degrabă decât bazându-se pe un număr mai mic de frecvențe, această lucrare arată captarea proprietăților dielectrice reprezentând modificări complexe și cu mai multe fațete datorate nivelurilor ridicate de Ca2+ induse de ionomicină.

Abilitatea de a identifica modificările citoplasmatice de Ca2+ are potențialul de a ajuta la îmbunătățirea înțelegerii noastre a multor boli asociate ale mușchilor scheletici, cum ar fi DMD, cașexia și procesul de dezvoltare a sarcopeniei [2]. Având în vedere că lucrările publicate mai devreme au arătat, de asemenea, că influxul de calciu este un factor important în modul în care stresul oxidativ pe termen lung modifică proprietățile electrice ale celulelor musculare, rezultatele acestui studiu nu sunt menite să diferențieze între gestionarea defectuoasă a calciului și stresul oxidativ, ci mai degrabă să explice contribuția proastă administrare a calciului la răspunsurile la stresul oxidativ observate anterior. Această lucrare este, de asemenea, limitată de selectivitatea metodei spectroscopice electrice pentru a defini cu certitudine contributorii moleculari sau ionici specifici. Datorită complexității gestionării ionilor în interiorul modelelor celulare, în timp ce tratamentul este destinat să modifice concentrația intracelulară de Ca2+, efectele altor ioni sau molecule pot contribui, de asemenea, la modificările observate în semnalul electric. Această limitare a selectivității de detectare a ionilor a fost raportată într-o soluție apoasă la frecvențe înalte [39,40]. Deoarece măsurătorile electrice sunt pe scară largă nespecifice și bolile oxidative au efecte complexe și multiple asupra celulelor musculare, obiectivul este de a extinde înțelegerea modului în care aceste efecte se manifestă electric. Deoarece se știe că tratamentul cu ionomicină modifică concentrația ionilor în interiorul celulelor fără a induce stres oxidativ, acest studiu ne permite să ne concentrăm asupra manifestării dezechilibrului de calciu în impedanța celulară. În plus, în timp ce această lucrare se concentrează pe mușchiul scheletic, potențialul de a monitoriza repausul neuronilor și concentrația alterată de Ca2+ are implicații pentru mai multe boli [41,42]. De obicei, măsurarea Ca2+ in vivo se bazează pe includerea agenților fluorescenți precum Fura-2 în această lucrare pentru a analiza Ca2+ citosolic sau Mag-Fluo-4 să se uite la Ca2+ în reticulul endoplasmatic [20,43]. Cu toate acestea, aceste opțiuni necesită etichetarea celulelor și procese complexe de tratare, ambele fiind evitate prin măsurarea electrică. Sistemul electric prezentat poate oferi o vedere mai largă a proprietăților dielectrice individuale ale celulei la frecvențe multiple, măsurare mai rapidă și mai puține resurse necesare. Este necesar să se demonstreze o sensibilitate realistă la nivelurile biologice ale citoplasmei Ca2+ pentru diagnosticarea bolilor sau aplicațiile de monitorizare, care vor modela abordarea noastră în viitor. În continuare, modificările spectrale observate în această lucrare vor fi utilizate într-un studiu suplimentar al probelor clinice ME/CFS, care analizează modul în care proprietățile electrice ale mușchilor scheletici la o varietate de frecvențe pot fi corelate cu modificările biologice pentru a îmbunătăți înțelegerea noastră a acestei boli rare.

5. Concluzii

Pe baza măsurătorilor electrice și a parametrilor extrași corespunzători, există o modificare subtilă a modelelor spectrale MHz și GHz care poate fi corelată cu nivelurile de Ca2+ citoplasmatice bazate pe imagini fluorescente. Diferențele măsurate electric pot fi descrise în continuare prin modificări ale parametrilor dielectrici de permitivitate citoplasmatică (εc) și conductivitate (σc). În această lucrare, s-a constatat că creșterea concentrației citoplasmatice de Ca2+ poate fi asociată cu o creștere semnificativă a conductivității citoplasmatice și o scădere a permitivității citoplasmatice. Acest sistem de monitorizare îmbunătățește profunzimea informațiilor disponibile despre condițiile intracelulare și studiul ionilor în citoplasmă. Lucrarea prezentată aici este limitată de lipsa de comparație cu corelația reală a concentrației și detecția selectivă a sistemului de măsurare la anumiți ioni; prin urmare, sunt necesare explorări suplimentare pentru a dezvolta un adevărat sistem de monitorizare a bolii. Acestea fiind spuse, înțelegerea acestor niveluri de Ca2+ poate ajuta la înțelegerea și evaluarea progresiei bolii mușchilor scheletici și a eficacității tratamentului. În plus, prin modelarea acestor modificări în contextul modificărilor oxidative pre-evaluate, se pot face deducții importante despre modul în care diferitele proprietăți asociate cu ME/CFS contribuie la un profil electric general pentru a se deplasa către un instrument de diagnostic unic și rapid.

Contribuții ale autorului:Conceptualizare, CAF, TP și XC; metodologie, CAF, MF, TP și XC; software, CAF; validare, CAF, MF, TP și XC; analiza formală, CAF; investigație, CAF, CS, LM, TP și XC; resurse, TP și XC; curatarea datelor, CAF, CS, LM și TP; redactare — pregătire originală a proiectului, CAF; scriere – revizuire și editare, MF, TP și XC; vizualizare, CAF; supraveghere, MF, TP și XC; administrarea proiectelor, TP și XC; achiziție de finanțare, TP și XC Toți autorii au citit și au fost de acord cu versiunea publicată a manuscrisului.

Finanțarea:CAF și XC apreciază sprijinul prin finanțare din partea Fundației Naționale de Știință, Divizia de Sisteme Electrice, Comunicații și Cibernetice Grant 1809623. CS, LM și TP sunt sprijinite prin granturi ale Universității „G. d'Annunzio”.

Declarația Comisiei de revizuire instituțională:Nu se aplică.

Declarație de consimțământ informat:Nu se aplică.

Declarație de disponibilitate a datelor:Datele sunt disponibile la cerere.

Conflicte de interes:Autorii nu declară niciun conflict de interese.

Referințe

1. Beccafico, S.; Puglielli, C.; Pietrangelo, T.; Bellomo, R.; Fano, G.; Fuller, S. Efecte dependente de vârstă asupra aspectelor funcționale în celulele satelit umane. Ann. NY Acad. Sci. 2007, 1100, 345–352. [CrossRef]

2. Bravo-Sagua, R.; Parra, V.; Muñoz-Cordova, F.; Sanchez-Aguilera, P.; Garrido, V.; Contreras-Ferrat, A.; Chiong, M.; Lavandero, S. Capitolul cinci—Reticulul sarcoplasmatic și semnalizarea calciului în celulele musculare: homeostazie și boală. În Revizuirea Internațională a Biologiei celulare și moleculare; Kepp, O., Galluzzi, L., Eds.; Biologia reticulului endoplasmatic; Presă academică: Cambridge, MA, SUA, 2020; Volumul 350, p. 197–264.

3. Protasi, F.; Pietrangelo, L.; Boncompagni, S. Calcium Entry Units (CEUs): Perspective in Skeletal Muscle Function and Disease. J. Muscular Res. Cell Motil. 2021, 42, 233–249. [CrossRef] [PubMed]

4. Espinosa, A.; Henríquez-Olguín, C.; Jaimovici, E. Specii reactive de oxigen și semnale de calciu în mușchiul scheletic: o diafonie implicată atât în ​​semnalizarea normală, cât și în boală. Cell Calcium 2016, 60, 172–179. [CrossRef]

5. Agrawal, A.; Suryakumar, G.; Rathor, R. Rolul semnalizării defective de Ca2+ în slăbiciunea mușchilor scheletici: implicații farmacologice. J. Cell Commun. Semnal. 2018, 12, 645–659. [CrossRef] [PubMed]

6. Gerwyn, M.; Maes, M. Mecanisme care explică oboseala musculară și durerea musculară la pacienții cu encefalomielită mialgică/sindrom de oboseală cronică (ME/CFS): o revizuire a descoperirilor recente. Curr. Reumatol. Rep. 2017, 19, 1. [CrossRef]

7. Dargelos, E.; Brulé, C.; Combaret, L.; Hadj-Sassi, A.; Dulong, S.; Poussard, S.; Cottin, P. Implicarea sistemului proteolitic dependent de calciu în îmbătrânirea mușchilor scheletici. Exp. Gerontol. 2007, 42, 1088–1098. [CrossRef] [PubMed]

8. Leijendekker, WJ; Passaquin, A.-C.; Metzinger, L.; Rüegg, UT Reglarea calciului citosolic în celulele musculare scheletice ale șoarecelui Mdx în condiții de stres. Br. J. Pharmacol. 1996, 118, 611–616. [CrossRef]

9. Berchtold, MW; Brinkmeier, H.; Müntener, M. Ion de calciu în mușchiul scheletic: rolul său crucial pentru funcția musculară, plasticitate și boală. Physiol. Rev. 2000, 80, 1215–1265. [CrossRef]

10. Tang, W.; Tang, D.; Ni, Z.; Xiang, N.; Yi, H. Un sistem portabil de analiză cu o singură celulă care integrează captarea hidrodinamică cu spectroscopie de impedanță în bandă largă. Sci. China Technol. Sci. 2017, 60, 1707–1715. [CrossRef]

11. Bao, X.; Ocket, I.; Bao, J.; Doijen, J.; Zheng, J.; Kil, D.; Liu, Z.; Puers, B.; Schreurs, D.; Nauwelaers, B. Spectroscopie dielectrică în bandă largă a culturilor celulare. IEEE Trans. Microw. Teoria Teh. 2018, 66, 5750–5759. [CrossRef]

12. Ning, Y.; Multari, C.; Luo, X.; Palego, C.; Cheng, X.; Hwang, JCM; Denzi, A.; Merla, C.; Apollonio, F.; Liberti, M. Detectia electrica in banda larga a celulelor biologice individuale. IEEE Trans. Microw. Teoria Teh. 2014, 62, 1905–1911. [CrossRef]

13. Grenier, K.; Tamra, A.; Zedek, A.; Poiroux, G.; Artis, F.; Chen, T.; Chen, W.; Poupot, M.; Fournie, J.-J.; Dubuc, D. Caracterizarea moleculelor cu volum scăzut și fără etichete și monitorizare celulară cu spectroscopie dielectrică cu microunde. În Proceedings of the 2018 IEEE International Microwave Biomedical Conference (IMBioC), Philadelphia, PA, SUA, 14–15 iunie 2018; IEEE: Piscataway, NJ, SUA, 2018; pp. 82–84.

14. Foster, KR; Schwan, HP Proprietăți dielectrice ale țesuturilor și materialelor biologice: o revizuire critică. Crit. Rev. Biomed. ing. 1989, 17, 25–104.

15. Markx, GH; Davey, CL Proprietățile dielectrice ale celulelor biologice la radiofrecvențe: aplicații în biotehnologie. Enzimă. Microb. Tehnol. 1999, 25, 161–171. [CrossRef]

16. Nasir, N.; Al Ahmad, M. Caracterizare electrică a celulelor: proprietăți dielectrice, amestecuri și teorii de modelare. J. ing. 2020, 2020, 9475490. [CrossRef]

17. Grenier, K.; Dubuc, D.; Chen, T.; Artis, F.; Chretiennot, T.; Poupot, M.; Fournie, J.-J. Progrese recente în spectroscopie dielectrică bazată pe microunde la nivel celular pentru investigațiile cancerului. IEEE Trans. Microw. Teoria Teh. 2013, 61, 2023–2030. [CrossRef]

18. ATCC. L6—CRL-1458. Disponibil online: https://www.atcc.org/products/crl-1458 (accesat pe 24 octombrie 2022).

19. Fioretti, B.; Pietrangelo, T.; Catacuzzeno, L.; Franciolini, F. Canalul K+ activat de conductanță intermediară Ca2+- este exprimat în mioblastele C2C12 și este reglat în jos în timpul miogenezei. A.m. J. Physiol. Fiziol celular. 2005, 289, C89–C96. [CrossRef] [PubMed]

20. Pietrangelo, T.; Mariggiò, MA; Lorenzon, P.; Fuller, S.; Protasi, F.; Rathbone, M.; Werstiuk, E.; Fanò, G. Caracterizarea site-urilor specifice de legare a GTP în celulele musculare scheletice de șoarece C2C12. J. Muscular Res. Cell Motil. 2002, 23, 107–118. [CrossRef] [PubMed]

21. Ferguson, C.; Pini, N.; Du, X.; Farina, M.; Hwang, JMC; Pietrangelo, T.; Cheng, X. Impedanța electrică în bandă largă ca o caracterizare nouă a stresului oxidativ în celulele musculare scheletice unice L6. Anal. Chim. Acta 2021, 1173, 338678. [CrossRef] [PubMed]

22. Du, X.; Ferguson, C.; Ma, X.; Cheng, X.; Hwang, JCM Spectroscopie de impedanță în bandă ultralargă a nucleului într-o celulă vie. IEEE J. Electromagn. Microw RF. Med. Biol. 2021, 6, 267–272. [CrossRef]

23. Du, X.; Ladegard, C.; Ma, X.; Cheng, X.; Hwang, JCM Sensarea electrică în bandă largă a dimensiunii nucleului într-o celulă vie de la 900 Hz la 40 GHz. În Proceedings of the 2020 IEEE MTT-S International Microwave Biomedical Conference (IMBioC), Toulouse, Franța, 14-17 decembrie 2020; pp. 1–4.

24. Caspers, F. RF Engineering Concepte de bază: S-Parameters. arXiv 2012, arXiv:1201.2346v1.

25. Kidokoro, Y. Modificări de dezvoltare ale proprietăților electrice ale membranei într-o linie celulară a mușchilor scheletici de șobolan. J. Physiol. 1975, 244, 129–143. [CrossRef] [PubMed]

26. Ma, X.; Du, X.; Multari, CR; Ning, Y.; Luo, X.; Gholizadeh, V.; Palego, C.; Cheng, X.; Hwang, JCM Măsurarea în bandă largă reproductibilă pentru capacitatea citoplasmei unei celule biologice. În Proceedings of the 2016 IEEE MTT-S International Microwave Symposium (IMS), San Francisco, CA, SUA, 22–27 mai 2016; IEEE: Piscataway, NJ, SUA, 2016; pp. 1–4.

27. Erdahl, WL; Chapman, CJ; Taylor, RW; Pfeiffer, DR Ca2+ Proprietăți de transport ale Ionoforilor A23187, Ionomicinei și 4-BrA23187 într-un sistem de model bine definit. Biophys. J. 1994, 66, 1678–1693. [CrossRef]

28. Caridha, D.; Yorick, D.; Cabezas, M.; Wolf, L.; Hudson, TH; Dow, GS Perturbarea homeostaziei calciului indusă de meflochină în celulele de mamifere este similară cu cea indusă de ionomicină. Antimicrobian. Agenti Chemother. 2008, 52, 684–693. [CrossRef] [PubMed]

29. Sözer, EB; Vernier, PT Modularea răspunsurilor biologice la stimuli electrici de 2 ns prin inversarea câmpului. Biochim. Biophys. Acta (BBA)—Biomembr. 2019, 1861, 1228–1239. [CrossRef]

30. Pakhomova, ON; Grigore, B.; Semenov, I.; Pakhomov, AG Expansiunea porilor mediată de calciu și moartea celulelor în urma nanoelectroporării. Biochim. Biophys. Acta 2014, 1838, 2547–2554. [CrossRef] [PubMed]

31. Burke, RC; Bardet, SM; Carr, L.; Romanenko, S.; Arnaud-Cormos, D.; Leveque, P.; O'Connor, RP Câmpurile electrice pulsate în nanosecunde depolarizează potențialul transmembranar prin canalele K+, Ca2+ și TRPM8 dependente de tensiune în celulele de glioblastom U87. Biochim. Biophys. Acta Biomembr. 2017, 1859, 2040–2050. [CrossRef]

32. Zhang, J.; Blackmore, PF; Hargrave, BY; Xiao, S.; Beebe, SJ; Schoenbach, KH Câmp electric cu puls în nanosecundă (Nanopulse): un nou agonist non-ligand pentru activarea trombocitelor. Arc. Biochim. Biophys. 2008, 471, 240–248. [CrossRef]

33. Keller, C.; Hellsten, Y.; Steinberg, A.; Klarlund Pedersen, B. Reglarea diferențială a IL-6 și TNF- prin calcineurină în celulele musculare scheletice umane. Cytokine 2006, 36, 141–147. [CrossRef] [PubMed]

34. Holmes, AG; Watt, MJ; Carey, AL; Febbraio, MA Ionomicina, dar nu dozele fiziologice de epinefrină, stimulează expresia ARNm a interleukinei-6 în mușchii scheletici și eliberarea de proteine. Metabolism 2004, 53, 1492–1495. [CrossRef]

35. Huang, H.; Zhao, Y.; Shang, X.; Ren, H.; Zhao, Y.; Liu, X. Expresia CAIII în mușchiul scheletic este reglată de semnalizarea Ca2+–CaMKII– MEF2C. Exp. Cell Res. 2019, 385, 111672. [CrossRef]

36. Roufa, D.; Wu, FS; Martonosi, AN. Efectul ionoforilor Ca2+ asupra sintezei proteinelor în mușchiul scheletic cultivat. Biochim. Biophys. Acta (BBA)—Gen. Subj. 1981, 674, 225–237. [CrossRef]

37. Pietrangelo, T.; Di Filippo, ES; Mancinelli, R.; Doria, C.; Rotini, A.; Fanò-Illic, G.; Fuller, S. Antrenamentul de intensitate scăzută îmbunătățește potențialul de regenerare a mușchilor scheletici. Față. Physiol. 2015, 6, 399. [CrossRef] [PubMed]

38. Petchakup, C.; Tay, HM; Li, KHH; Hou, HW Citometrie integrată cu impedanță inerțială pentru izolarea rapidă a leucocitelor fără etichete și profilarea capcanelor extracelulare de neutrofile (NET). Lab Chip 2019, 19, 1736–1746. [CrossRef]

39. Funkner, S.; Niehues, G.; Schmidt, DA; Heyden, M.; Schwaab, G.; Callahan, KM; Tobias, DJ; Havenith, M. Urmărirea mișcărilor de joasă frecvență în soluții apoase de sare: semnăturile vibraționale de teraherți ale ionilor hidratați. J. Am. Chim. Soc. 2012, 134, 1030–1035. [CrossRef] [PubMed]

40. Balos, V.; Kaliannan, NK; Elgabarty, H.; Wolf, M.; Kühne, TD; Sajadi, M. Spectroscopia Terahertz-Raman rezolvată în timp arată că cationii și anionii modifică în mod distinct interacțiunile intermoleculare ale apei. Nat. Chim. 2022, 14, 1031–1037. [CrossRef]

41. Gleichmann, M.; Mattson, MP Homeostazia și dereglarea calciului neuronal. Antioxid. Semnal redox. 2011, 14, 1261–1273. [CrossRef] [PubMed]

42. Brini, M.; Calì, T.; Ottolini, D.; Carafoli, E. Semnalizarea calciului neuronal: Funcție și disfuncție. Celulă. Mol. Life Sci. 2014, 71, 2787–2814. [CrossRef]

43. Milano, AF; Rincón, OA; Arango, LB; Reutovich, AA; Smith, GL; Giraldo, MA; Bou-Abdallah, F.; Calderón, JC Calibrarea mușchilor scheletici de mamifere Ca2+ tranzitorii înregistrate cu colorantul rapid Ca2+ Mag-Fluo-4. Biochim. Biophys. Acta (BBA)—Gen. Subj. 2021, 1865, 129939. [CrossRef]

Disclaimer/Nota editorului:Declarațiile, opiniile și datele conținute în toate publicațiile sunt exclusiv ale autorilor și colaboratorilor individuali și nu ale MDPI și/sau ale editorilor. MDPI și/sau editorii își declină responsabilitatea pentru orice vătămare a persoanelor sau proprietății care rezultă din orice idei, metode, instrucțiuni sau produse la care se face referire în conținut.

【Pentru mai multe informații:george.deng@wecistanche.com / WhatsApp:8613632399501】