Efectul vaccinării cu pulpei asupra dezvoltării și longevității imunității Partea 2

4. Discutie

În studiul de față, am demonstrat că puii cărora li s-a administrat în serie vaccinuri vii atenuate împotriva IBV, NDV și ILTV au fost protejați împotriva provocării omoloage cu IBV, NDV sau ILTV timp de cel puțin 36 de săptămâni, așa cum este determinat de detectarea virusului provocat, semnele clinice, histopatologie. , și criostază la 5 zile după provocare.

În plus, studiul nostru a arătat că vârsta la vaccinare și intervalele dintre fiecare vaccinare nu au interferat cu dezvoltarea imunității la fiecare virus și, în consecință, cu protecția împotriva provocărilor omoloage. Am conceput protocolul nostru de vaccinare pentru a reprezenta un program tipic de vaccinare pentru IBV, NDV și ILTV la puii comerciali. Cu cunoștințele că virusurile vaccinale vii pot persista în efective, nu a fost clar, până acum, dacă imunitatea indusă de vaccinurile vii ar putea fi compromisă din cauza interferenței virale, fenomen în care un virus care se replica blochează infecția și/sau replicarea altuia. virus [9,10].

Deși vaccinurile din prezentul studiu au fost administrate la intervale de 2 sau 4 săptămâni, este fezabil ca virusul de la o imunizare anterioară să fie încă prezent la momentul vaccinării ulterioare. Vaccinurile IBV au fost detectate în tractul respirator până la 28 de zile după vaccinare [27], iar IBV a fost izolat din tampoane traheale și cloacale colectate la punctul de ouat și la vârsta de 19 săptămâni la găini care fuseseră virus-negative de mai multe ori. săptămâni după recuperarea după inoculare la vârsta de o zi [4]. Fentie, et al. [28] au raportat că puii vaccinați cu NDV B1 elimină virusul vaccinului la 14 zile după inoculare. În plus, un studiu al lui Hughes și colab. [29] au demonstrat pierderea intermitentă în trahee de la puii imunizați cu ILTV între 7 și 14 săptămâni după vaccinare.

[Plantarea Cistanche pentru îmbunătățirea imunității. Studiile au arătat că polizaharidele, flavonoidele și alte substanțe din Cistanche au și anumite efecte antioxidante, care pot ajuta organismul să elimine radicalii liberi și să reducă reacțiile de oxidare. Radicalii liberi sunt oxidanți puternici care pot deteriora ADN-ul, proteinele și lipidele celulelor, provocând moartea sau mutația celulelor și chiar apariția tumorilor. Efectul antioxidant al Cistanche poate reduce în mod eficient aceste riscuri, promovând astfel imunitatea organismului.]

Click cistanche deserticola supliment produs

Au fost publicate puține studii experimentale privind infecțiile virale secvențiale și mai puține încă au fost luate în considerare în contextul agenților patogeni respiratori virali de la păsări. Costa-Hurtado, et al. [30] a demonstrat că puii și curcanii infectați în serie cu o tulpină mezogenă de NDV și virusul gripei aviare înalt patogene (HPAIV) la 3 zile distanță au dus la o scădere inițială urmată de o creștere ulterioară a replicării celui de-al doilea virus. Într-un studiu ulterior [11], același grup a constatat că virusul gripei aviare cu patogenitate scăzută administrat la 3 zile după o tulpină lentogenă de NDV a arătat interferență virală, în timp ce interferența virală nu a fost observată atunci când virușii au fost administrați simultan. Nu am măsurat replicarea virusului vaccin în studiul de față și, prin urmare, nu am putut determina dacă un virus vaccin a compromis infecția și replicarea unui virus vaccinal ulterior.

Cu toate acestea, scopul nostru a fost să determinăm dacă puii vaccinați secvenţial cu toate cele trei viruși au fost protejați de replicarea virală și semnele clinice în urma provocării omoloage. Astfel, indiferent de interferența virală, datele noastre arată că imunitatea la virusurile vaccinale individuale nu a fost compromisă în urma administrării secvențiale a mai multor vaccinuri vii atenuate care vizează diferiți agenți patogeni virali ale tractului respirator.

Detectarea ARN IBV în amigdalele cecale ale păsărilor vaccinate/neprovocate la 20 și 24 WOA, dar nu la momente ulterioare, indică faptul că ARN-ul virusului vaccinal rezidual a rămas în amigdalele cecale până la cel puțin 24 WOA, după a doua vaccinare IBV. IBV a fost izolat din amigdalele cecale la 14 săptămâni după infecție și se știe că persistă câteva luni în diferite organe interne [4,31]. ARN-ul IBV a fost detectat, de asemenea, în HG de control negativ neprovocat la 24 WOA, dar a fost absent din toate celelalte țesuturi colectate de la martorii negativi, care nu au prezentat semne clinice de infecție cu IBV. Nu este clar de ce am detectat ARN IBV în probele din HG la păsările martor negativ, dar probabil reprezintă o contaminare încrucișată în timpul procesării probelor, deoarece IBV nu a fost detectat în niciun alt țesut.

Leziunile histopatologice traheale ale decilierii la controalele pozitive au fost în concordanță cu rapoartele anterioare ale histopatologiei induse de IBV [32,33] și au fost confirmate în continuare de prezența criostazei printre martorii pozitivi. După cum era de așteptat, păsările vaccinate cu IBV/provocate au fost protejate de criostază. Farmacopeea Europeană afirmă că criostaza poate fi utilizată pentru a evalua eficacitatea vaccinului IBV, în care lipsa criostazei ar indica faptul că vaccinul a fost eficient [34]. Prin urmare, aceste observații confirmă în continuare că păsările vaccinate cu IBV au fost protejate de provocări omoloage.

Observarea titrurilor robuste de IgG serice specifice IBV la păsările vaccinate este în concordanță cu studiile anterioare care arată că infecția cu IBV stimulează un răspuns umoral la pui [35], dar că titrurile de anticorpi circulanți nu se corelează cu rezistența la infecție [36]. Prin urmare, prezența titrurilor de IgG serice specifice IBV indică doar că pasărea a fost expusă la un virus de vaccin sau provocare și nu ar trebui corelată cu alte măsuri de protecție. Lipsa titrurilor semnificative la păsările nevaccinate/provocate poate fi explicată prin momentul timpuriu al colectării după provocare. Orr-Burks, şi colab. [37] au descoperit că modificări semnificative ale titrului seric de IgG nu au fost detectate decât la 10 zile după inoculare.

Orr-Burks, şi colab. [37] a demonstrat, de asemenea, o lipsă de semnificație a titrului IgA specific IBV în lacrimi la 5 zile după expunerea atât primară, cât și secundară la IBV, dar titrul IgA a fost semnificativ mai mare între 6 și 16 zile după expunerea primară la IBV. În acest studiu, titrurile de IgA specifice IBV măsurate în lacrimi la 5 dpc nu au evidențiat tendințe consistente și pot fi explicate prin momentul timpuriu al colectării post-infectie. A depășit scopul acestui studiu colectarea probelor după 5 dpc, dar producția de IgA specifică IBV în lacrimi la momente ulterioare a fost demonstrată într-un experiment diferit în care lacrimile au fost colectate între 10 și 14 dpc. În acel experiment, puii naivi provocați cu IBV au prezentat o tendință mai mare a titrului specific de IgA în comparație cu martorii neprovocați [38].

Decizia de a utiliza vaccinul B1 pentru provocarea NDV sa bazat pe reglementările de biosecuritate și pe lipsa unor facilități adecvate de biosecuritate de nivel 3 necesare pentru o provocare cu tulpini mezogene sau velogenice de NDV. Deoarece am folosit o tulpină lentogenă de NDV ca virus de provocare în designul nostru experimental, protecția s-a bazat în primul rând pe o detecție a virusului redusă semnificativ sau fără detectarea la 5 zile după provocare, care este o măsură a imunității locale care previne infecția și/sau replicarea virusului. Probabil, o pasăre protejată de infecția cu o tulpină lentogenă de NDV ar prezenta, de asemenea, un anumit nivel de protecție împotriva expunerii la tulpini mezogene sau velogenice. Păsările vaccinate la fiecare moment de prelevare au avut ARN viral semnificativ mai scăzut sau fără provocare în comparație cu grupurile de control pozitiv, ceea ce indică faptul că păsările vaccinate au dezvoltat un răspuns imun local și au fost într-adevăr protejate, în timp ce martorii pozitivi nevaccinați nu au fost. Deoarece NDV lentogenă provoacă doar o infecție respiratorie sau enterică ușoară [3], nu a fost surprinzător faptul că semnele respiratorii și modificările histologice au fost ușoare sau absente în ciuda prezenței ARN viral. Am observat semne clinice de infecție cu NDV doar la 20 WOA la martorii pozitivi, în timp ce doar câteva păsări au prezentat semne clinice ușoare la 24 și 28 WOA și nu au fost observate semne clinice de boală la perioadele de provocare ulterioare. Această observație este în concordanță cu cunoștințele existente că ND tinde să fie mai severă la păsările mai tinere [39].

Lipsa criostazei observată la martorii pozitivi infectați cu NDV B1-contrastează cu rapoartele anterioare care demonstrează că NDV a provocat criostază în explantele traheale. Butler și colab. [40] au demonstrat că NDV a provocat ciliostaza în 2 până la 6 zile după infectarea explantelor traheale, iar Malo și colab. [41] au raportat că, după vaccinarea puilor de o zi cu NDV lentogenă, vârful criostazei a avut loc la 5 și 7 dpi și a scăzut cu 13 dpi. Discrepanța dintre rezultatele noastre și studiile anterioare poate fi explicată prin utilizarea unei tulpini NDV lentogene diferite; B1 în studiile noastre și LaSota în rapoartele anterioare [41]. Este bine stabilit că tulpina de vaccin LaSota este mai virulentă decât B1 [42], ceea ce poate explica iconostasul observat la puii vaccinați cu LaSota sau la explantele traheale infectate cu LaSota, în timp ce iconostasul nu a fost observat în studiul nostru folosind vaccinul B1.

Răspunsurile robuste ale anticorpilor IgG circulanți specifici NDV s-au dezvoltat după vaccinarea NDV și au rămas crescute, ceea ce a fost în concordanță cu cercetările anterioare care indicau că anticorpii pot fi detectați până la un an la păsările imunizate de mai multe ori împotriva NDV [39]. Cu excepția 28 WOA, titrurile de IgG la păsările nevaccinate/provocate nu au fost semnificativ crescute în comparație cu titrurile la martorii negativi. Această observație nu este surprinzătoare, având în vedere că anticorpii specifici NDV nu sunt detectați în ser decât la 6-10 zile după expunere [39].

Pentru păsările provocate de ILTV, vaccinarea a prevenit replicarea virusului provocat în trahee și HG, dar nu a blocat complet replicarea virusului în conjunctivă, în special la 32 și 36 WOA. Acest lucru poate sugera o scădere a imunității locale împotriva ILTV după a doua vaccinare la 16 WOA. În plus, apropierea conjunctivei de locul de inoculare (picătură oculară și intranazală) ar putea explica de ce răspunsul imun local nu a fost capabil să blocheze complet replicarea virală în conjunctivă, dar a curățat cu succes virusul înainte ca acesta să se poată replica în HG și trahee.

Foarte puține controale pozitive (nevaccinate/provocate) au demonstrat dovezi histologice ale infecției cu ILT în trahee, deși toate controalele pozitive au fost testate pozitiv pentru ADN ILT prin PCR. Această constatare nu este surprinzătoare în lumina unui raport al lui Guy și colab. [43], care a ilustrat că detectarea histologică a ILT este foarte specifică (98 la sută), dar slab sensibilă (42 la sută). În special, corpii de incluziune intranucleară sunt prezenți numai în timpul infecției inițiale (1-5 zile) și dispar în urma necrozei și descuamării celulelor epiteliale [44], ceea ce poate explica observația că la 5 dpc doar 3/9 și 1/10 controale pozitive la 20 și, respectiv, 28 WOA, au avut dovezi histologice de infecție cu ILT în ciuda prezenței ADN ILT în trahee.

Absența criostazei observată atât la păsările vaccinate, cât și la cele nevaccinate, provocate de ILTV, la 5 dpc, nu a fost surprinzătoare, având în vedere că Butler și colab. [40] au descoperit că doar unele tulpini de ILTV au cauzat criostază și nu s-au corelat cu virulența. Mai mult, autorii au arătat că criostaza apare rar înainte de 6 zile, și uneori chiar și 9 zile, după inoculare. În plus, Gerganov și Surtmadzhiev [45] au demonstrat, de asemenea, criostazia în culturile de organe traheale infectate cu ILTV la 7-8 zile după infecție. Prin urmare, rezultatele noastre combinate cu studiile anterioare indică faptul că măsurarea iconostasului poate să nu fie un marker de încredere al protecției împotriva infecției cu ILTV și că criostazia în studiile privind infecția cu ILTV poate necesita evaluarea ulterior după inoculare.

Lipsa unor titruri semnificative de IgG serice specifice ILTV la controalele pozitive nevaccinate poate fi explicată prin momentul precoce al colectării post-provocare, deoarece anticorpii specifici ILTV nu devin detectabili până la 5-7 dpi și atinge vârful la 21 dpi [46]. ]. Cu toate acestea, este de remarcat faptul că titrurile de anticorpi nu sunt corelate cu protecția împotriva infecției cu ILTV [44]. Titrurile de IgG au fost robuste la păsările vaccinate pe parcursul studiului și susțin datele anterioare conform cărora anticorpii pot fi detectabili timp de cel puțin un an [44].

Luate împreună, datele noastre indică faptul că un program tipic de vaccinare a puilor constând din vaccinuri vii atenuate administrate în serie împotriva IBV, NDV și ILTV nu interferează cu răspunsurile imune la vaccinurile individuale, iar păsările sunt protejate în mod adecvat împotriva provocării omoloage până la cel puțin 36 de ani. WOA. Aceste informații sunt importante deoarece arată că vaccinurile vii atenuate administrate consecutiv împotriva agenților patogeni respiratori multipli pot fi o strategie eficientă de vaccinare pentru dezvoltarea imunității protectoare împotriva fiecărui agent de boală la păsările cu viață lungă.

Contribuții ale autorului:

Conceptualizare, MWJ; Metodologie, EJA, BJJ, SWM, MG și MWJ; Analiză formală, EJA, BJJ, SWM și MG; Investigație, EJA, BJJ, SWM, MG și MWJ; Resurse, BJJ și MWJ; Curatarea datelor, EJA, BJJ, SWM, MG și MWJ; Redactare-schirt original, EJA și MWJ; Scriere-revizuire și editare, BJJ, SWM, MG și MWJ; Supraveghere, BJJ și MWJ; Administrarea proiectelor, EJA; Achiziție de finanțare, MWJ

Finanțarea:

Această activitate a fost finanțată de USDA, NIFA și Proiectul agricol coordonat pentru bolile respiratorii ale păsărilor de curte.

Conflicte de interes:

Autorii nu declară niciun conflict de interese.

Referințe

1. Bermudez, AJ; Stewart-Brown, B. Prevenirea și diagnosticul bolilor. În Diseases of Poultry, ed. a XII-a; Saif, YM, Ed.; Editura Blackwell: Ames, IA, SUA, 2008; pp. 5–42.

2. De Wit, JJ; Cook, JKA; Van der Heijden, HMJF Variante ale virusului bronșitei infecțioase: o trecere în revistă a istoriei, a situației actuale și a măsurilor de control. Avian Pathol. 2011, 40, 223–235. [CrossRef] [PubMed]

3. Mayers, J.; Mansfield, KL; Brown, IH Rolul vaccinării în atenuarea riscului și controlul bolii Newcastle la păsările de curte. Vaccin 2017, 35, 5974–5980. [CrossRef] [PubMed]

4. Cavanagh, D.; Gelb, J., Jr. Bronșită infecțioasă. În Diseases of Poultry, ed. a XII-a; Saif, YM, Ed.; Editura Blackwell: Ames, IA, SUA, 2008; p. 117–136.

5. Amarasinghe, GK; Bào, Y.; Basler, CF; Bavari, S.; Bere, M.; Bejerman, N.; Blasdell, KR; Bochnowski, A.; Briese, T.; Bukreyev, A.; et al. Taxonomia ordinului Mononegavirales: Actualizare 2017. Arh. Virol. 2017, 162, 2493–2504. [CrossRef] [PubMed]

6. Hanson, RP; Brandly, CA Identificarea tulpinilor de vaccin ale virusului bolii Newcastle. Știința 1955, 122, 156–157. [PubMed]

7. Dimitrov, KM; Afonso, CL; Miller, PJ; Yu, Î. Vaccinurile împotriva bolii Newcastle-A au rezolvat o problemă sau o provocare continuă? Veterinar. Microbiol. 2017, 206, 126–136. [CrossRef] [PubMed]

8. Garcia, M. Vaccinuri curente și viitoare și strategii de vaccinare împotriva bolii respiratorii laringotraheitei infecțioase (ILT) ale păsărilor de curte. Veterinar. Microbiol. 2017, 206, 157–162. [CrossRef] [PubMed]

9. DaPalma, T.; Doonan, BP; Trager, NM; Kasman, LM Review: O abordare sistematică a interacțiunilor virus-virus. Virus Res. 2010, 149, 1–9. [CrossRef]

10. Pinky, L.; Dobrovolny, HM Coinfecții ale tractului respirator: competiție virală pentru resurse. PLoS ONE 2016, 11, e0155589. [CrossRef]

11. Costa-Hurtado, M.; Afonso, CL; Miller, PJ; Spackman, E.; Kapczynski, DR; Swayne, DE; Ciobanesc, E.; Smith, D.; Zsak, A.; Pantin-Jackwood, M. Interferența virusului între virusul gripei aviare cu patogenitate scăzută H7N2 și virusul lentogen al bolii Newcastle în co-infecții experimentale la găini și curcani. Veterinar. Res. 2014, 45, 1. [CrossRef]

12. Villegas, P. Titrarea vaccinului cu virusul bolii Newcastle. În bolile virale aviare: Manual de laborator; Colegiul de Medicină Veterinară, Universitatea din Georgia: Atena, GA, SUA, 2004; p. 62.

13. Vagnozzi, A.; Riblet, SM; Williams, SM; Garcia, M.; Zavala, G. Infecția puilor de carne cu două tulpini virulente de virus al laringotraheitei infecțioase: Criterii de evaluare a infecțiilor experimentale. Avian Dis. 2015, 59, 394–399. [CrossRef]

14. Rodríguez-Avila, A.; Oldoni, I.; Riblet, S.; Garcia, M. Evaluarea protecției obținute prin expunerea directă și indirectă la vaccinuri vii atenuate cu virusul laringotraheitei infecțioase împotriva unei tulpini provocate recent din Statele Unite. Avian Pathol. JWVP2008, 37, 287–292. [CrossRef] [PubMed]

15. Toro, H.; Pennington, D.; Gallardo, RA; van Santen, VL; van Ginkel, FW; Zhang, J.; Joiner, KS Subpopulații cu virusul bronșitei infecțioase la puii vaccinați după provocare. Avian Dis. 2012, 56, 501–508. [CrossRef] [PubMed]

16. Oldoni, I.; Rodriguez-Avila, A.; Riblet, SM; Zavala, G.; Garcia, M. Patogenitatea și caracteristicile de creștere ale tulpinilor de virus ale laringotraheitei infecțioase selectate din Statele Unite. Avian Pathol. 2009, 38, 47–53. [CrossRef] [PubMed]

17. Cook, JKA; Orbell, SJ; Woods, MA; Huggins, MB Ample de protecție a tractului respirator oferit de diferite vaccinuri vii atenuate împotriva bronșitei infecțioase împotriva provocării cu virusuri de bronșită infecțioasă de serotipuri heterologe. Avian Pathol. 1999, 28, 477–485. [CrossRef] [PubMed]

18. De Wit, JJ; Boelm, GJ; van Gerwe, TJ; Swart, WA Mărimea eșantionului necesară în experimentele de provocare de vaccinare cu virusul bronșitei infecțioase, o meta-analiză. Avian Pathol. 2013, 42, 9–16. [CrossRef] [PubMed]

19. Jackwood, MW; Jordan, BJ; Roh, H.-J.; Hilt, DA; Williams, SM Evaluarea protecției împotriva virusului bronșitei infecțioase prin semne clinice, criostază, detectarea virusului provocat și histopatologie. Avian Dis. 2015, 59, 368–374. [CrossRef] [PubMed]

20. Guy, JS; Barnes, HJ; Morgan, LM Virulența virusurilor laringotraheitei infecțioase: comparație dintre virusurile vaccinale vii modificate și izolatele de câmp din Carolina de Nord. Avian Dis. 1990, 34, 106–113. [CrossRef]

21. Callison, SA; Hilt, DA; Boynton, TO; Probă, BF; Robison, R.; Swayne, DE; Jackwood, MW Dezvoltarea și evaluarea unui test Taqman RT-PCR în timp real pentru detectarea virusului bronșitei infecțioase de la puii infectați. J. Virol. Metode 2006, 138, 60–65. [CrossRef]

22. Mia Kim, L.; Suarez, DL; Afonso, CL Detectarea unei game largi de viruși ai bolii Newcastle de clasă I și II utilizând un test de reacție în lanț a polimerazei cu transcripție inversă multiplex în timp real. J. Vet. Diag. Investig. Oprit. Publ. A.m. conf. univ. Veterinar. laborator. Diag. Inc. 2008, 20, 414–425. [CrossRef]

23. Roh, HJ; Hilt, DA; Jackwood, MW Detectarea virusului bronșitei infecțioase cu utilizarea în timp real a reverse transcriptază-PCR cantitativă și corelarea cu detectarea virusului în ouăle embrionate. Avian Dis. 2014, 58, 398–403. [CrossRef]

24. Vagnozzi, A.; García, M.; Riblet, SM; Zavala, G. Protecție indusă de vaccinurile cu virusul laringotraheitei infecțioase singure și combinate cu virusul bolii Newcastle și/sau vaccinurile cu virusul bronșitei infecțioase. Avian Dis. 2010, 54, 1210–1219. [CrossRef] [PubMed]

25. Vagnozzi, A.; Riblet, SM; Zavala, G.; García, M. Optimizarea unei metode de PCR duplex în timp real pentru cuantificarea relativă a virusului laringotraheitei infecțioase. Avian Dis. 2012, 56, 406–410. [CrossRef] [PubMed]

26. Callison, SA; Riblet, SM; Oldoni, I.; Soare, S.; Zavala, G.; Williams, S.; Învierea, RS; Spackman, E.; Garcia, M. Dezvoltarea și validarea unui test Taqman PCR în timp real pentru detectarea și cuantificarea virusului laringotraheitei infecțioase la păsări de curte. J. Virol. Metode 2007, 139, 31–38. [CrossRef] [PubMed]

27. Roh, H.-J.; Hilt, DA; Williams, SM; Jackwood, MW Evaluarea eșecului vaccinului de tip Arkansas cu virusul bronșitei infecțioase la puii de carne comerciali. Avian Dis. 2013, 57, 248–259. [CrossRef] [PubMed]

28. Fentie, T.; Dadi, K.; Kassa, T.; Sahle, M.; Cattoli, G. Efectul vaccinării asupra caracteristicilor de transmitere a virusului bolii Newcastle foarte virulent la puii infectați experimental. Avian Pathol. JWVP2014, 43, 420–426. [CrossRef] [PubMed]

29. Hughes, CS; Williams, RA; Gaskell, RM; Iordania, FT; Bradbury, JM; Bennett, M.; Jones, RC Latența și reactivarea virusului vaccinului laringotraheitei infecțioase. Arc. Virol. 1991, 121, 213–218. [CrossRef] [PubMed]

30. Costa-Hurtado, M.; Afonso, CL; Miller, PJ; Ciobanesc, E.; DeJesus, E.; Smith, D.; Pantin-Jackwood, MJ Efectul infecției cu o tulpină mezogenă a virusului bolii Newcastle asupra infecției cu virusul gripei aviare foarte patogen la pui. Avian Dis. 2016, 60 (Supl. 1), 269–278. [CrossRef]

31. Alexandru, DJ; Gough, RE Izolarea virusului bronșitei infecțioase aviare de la puii infectați experimental. Res. Veterinar. Sci. 1977, 23, 344–347. [CrossRef]

32. Chousalkar, KK; Roberts, JR; Reece, R. Histopatologia a două serotipuri de virus al bronșitei infecțioase la găinile ouătoare vaccinate în faza de creștere. Polt. Sci. 2007, 86, 59–62. [CrossRef]

33. Chousalkar, KK; Roberts, JR; Reece, R. Histopatologie comparativă a două serotipuri de virus al bronșitei infecțioase (T și N1/88) la găini ouătoare și cocoși. Polt. Sci. 2007, 86, 50–58. [CrossRef]

34. Pharmeuropa.

35. Raj, GD; Jones, RC Virusul bronșitei infecțioase: imunopatogeneza infecției la pui. Avian Pathol. 1997, 26, 677–706. [CrossRef] [PubMed]

36. Raggi, LG; Lee, GG Lipsa corelației între infecțiozitate, răspuns serologic și provocare are ca rezultat imunizarea cu un vaccin cu virusul bronșitei infecțioase aviare. J. Immunol. 1965, 94, 538–543. [PubMed]

37. Orr-Burks, N.; Gulley, SL; Gallardo, RA; Toro, H.; van Ginkel, FW Imunoglobulina A ca răspuns umoral precoce după vaccinarea împotriva coronavirusului aviar pe mucoase. Avian Dis. 2014, 58, 279–286. [CrossRef] [PubMed]

38. Aston, EJ; Jackwood, MW; Gogal, RM, Jr.; Hurley, DJ; Fairchild, BD; Hilt, DA; Cheng, S.; Tensa, LR; Garcia, M.; Jordan, BJ Amoniacul ambiental nu inhibă răspunsul imun la vaccinarea cu virusul bronșitei infecțioase și protejează împotriva provocării omoloage la puii de carne. Veterinar. Imunol. Imunopatol. 2018, în curs de revizuire.

39. Alexandru, DJ; Senne, DA Boala Newcastle, alte paramixovirusuri aviare și infecții cu pneumovirus. În bolile păsărilor de curte; Saif, YM, Ed.; Editura Blackwell: Ames, IA, SUA, 2008; pp. 75–115.

40. Butler, M.; Ellaway, WJ; Hall, T. Studii comparative privind infecțiozitatea virusurilor respiratorii aviare pentru ouă, culturi celulare și explante traheale. J. Comp. Pathol. 1972, 82, 327–332. [CrossRef]

41. Malo, A.; de Wit, S.; Swart, WAJM Metode alternative pentru a compara siguranța vaccinurilor respiratorii vii atenuate împotriva bolii Newcastle la puii tineri. Veterinar. Rec. 2017, 181, 236–242. [CrossRef] [PubMed]

42. Martinez, JCS; Chou, WK; Berghman, LR; Carey, JB Evaluarea efectului vaccinului viu cu virusul bolii LaSota Newcastle ca imunizare primară asupra dezvoltării imune la puii de carne. Polt. Sci. 2018, 97, 455–462. [CrossRef] [PubMed]

43. Guy, JS; Barnes, HJ; Smith, LG Diagnosticul rapid al laringotraheitei infecțioase folosind o procedură de imunoperoxidază pe bază de anticorpi monoclonali. Avian Pathol. 1992, 21, 77–86. [CrossRef] [PubMed]

44. Guy, JS; Garcia, M. Laringotraheita. În bolile păsărilor de curte; Saif, YM, Ed.; Editura Blackwell: Ames, IA, SUA, 2008; p. 137–152.

45. Gerganov, G.; Surtmadzhiev, K. Cultivarea diferitelor virusuri aviare în culturi de organe de trahee de fazan și embrioni de pui. Veterinar. Meditsinski Nauk. 1982, 19, 18–24.

46. ​​Hitchner, SB; Shea, CA; White, PG Studii asupra unui test de neutralizare a serului pentru diagnosticul laringotraheitei la pui. Avian Dis. 1958, 2, 258–269. [CrossRef]

© 2019 de către autori. Licențiat MDPI, Basel, Elveția. Acest articol este un articol cu ​​acces deschis distribuit în conformitate cu termenii și condițiile licenței Creative Commons Attribution (CC BY).

Emily J. Aston 1, Brian J. Jordan 1,2, Susan M. Williams 1, Maricarmen García 1 și Mark W. Jackwood 1,*

1 Centrul de Diagnostic și Cercetare a Păsărilor de curte, Departamentul de Sănătate a Populației, Colegiul de Medicină Veterinară, Universitatea din Georgia, Atena, GA 30602, SUA; ejaston@ucdavis.edu (EJA); brian89@uga.edu (BJJ); smwillia@uga.edu (SMW); mcgarcia@uga.edu (MG) 2 Departamentul de știință a păsărilor de curte, Colegiul de Științe Agricole și de Mediu, Universitatea din Georgia, Atena, GA 30602, SUA.

Primit: 9 ianuarie 2019; Acceptat: 30 ianuarie 2019; Publicat: 2 februarie 2019

For more information:1950477648nn@gmail.com