Partea 1: Proprietățile antiinflamatorii și antioxidante ale meiului (Eleusine Coracana (L.) Gaertn.) Soiuri cultivate în Sri Lanka

Pentru mai multe informatii. a lua legaturatina.xiang@wecistanche.com

Prevalența bolilor mediate de inflamație și asociate stresului oxidativ este în creștere la nivel mondial, creând o cerere tot mai mare pentru surse noi deantiinflamatoragenţi şiantioxidanti. Acest studiu s-a concentrat pe determinarea in vitro a arahidonatului {{0}}lipoxigenazei (A{5-LOX), a xantinoxidazei (XO), a hialuronidazei, a activităților de inhibiție a izbucnirii oxidative și a proprietăților antioxidante ale lui Ravi, Rawana. și soiurile de mei Oshadha folosind extracte etanolice și metanolice. Dintre toate extractele, extractul metanolic de Oshadha a prezentat cele mai mari activități inhibitoare A5-LOX （ICsvalue∶ 484,42ug/ml） și XO (ICsvalue∶764,34ug/ml). Toate extractele au prezentat mai puțin de 50 procente activitate inhibitoare a hialuronidază la concentrație de 1 mg/ml, extractele metanolice au prezentat un potențial inhibitor moderat asupra speciilor reactive de oxigen (ROS) generate din fagocitele din sânge integral, cu valori IC0 variind între 26,9 și 27,7 ug/ml, în comparație cu ibuprofen (valoare IC: 11,18 ug/ml). Toate extractele au arătat o inhibare puternică a ROS produsă din neutrofilele polimorfonucleare izolate din sângele uman în comparație cu ibuprofen (valoarea ICs: 2,47 ug/ml), iar valorile ICs ale extractelor metanolice și etanolice au variat între 0,29 și 0,47 ug/ml și 1,35 până la 1,70ug/ml. respectiv. Toate extractele au avut cantități semnificativ mari de compuși fenolici, inclusivflavonoideși potențialul de a elimina cationul acidului 2,2'-azino-bis(3-etilbenzotiazolin-6-sulfonic) (ABTS), 2,2-difenil{-1-picril-hidrazil( DPPH) și radicalii de oxigen. În plus, au reușit să reducă ionii metalici și să chelate ionii metalici încheind reacțiile generatoare de radicali. Acesta este primul raport privind proprietățile inhibitoare A5-LOX, XO, hialuronidază și exploziile oxidative ale oricărui extract din orice soi de mei cultivat în Sri Lanka. Descoperirile au dezvăluit potențialul utilizării acestor extracte de mei ca surse naturale de candidați la medicamente antiinflamatoare. În plus, descoperirile au indicat că soiurile Ravi, Rawana și Oshadha sunt surse bune de antioxidanți. Prin urmare, consumul regulat al acestor soiuri de mei poate juca un rol important în prevenirea și managementul alimentar al bolilor asociate stresului oxidativ.

Click aici pentru a afla mai multe produse

1. Introducere

Inflamaţieeste o reacție defensivă aimunsistem pentru a elimina stimulii nocivi, cum ar fi agenții patogeni, celulele deteriorate și iritațiile alergice sau chimice, precum și pentru a începe procesul de vindecare. Deși inflamația este un răspuns normal dacă este necontrolată, inflamația excesivă duce la multe boli acute și cronice. În prezent, prevalența bolilor mediate de inflamație este în creștere la nivel mondial, creând o cerere tot mai mare pentru agenți antiinflamatori noi și eficienți [1, 2].

Arahidonatul 5-lipoxigenaza (A5-LOX) este o enzimă cheie care implică biosinteza mediatorilor potenți ai tulburărilor inflamatorii și a reacțiilor alergice. Catalizează formarea leucotrienelor din acidul arahidonic [3]. Leucotrienele sunt mediatori endogeni în patogeneza unui număr de boli inflamatorii, inclusiv astmul, rinita alergică, bronșita cronică, artrita reumatoidă, boala inflamatorie intestinală și reacțiile alergice [3,4]. Prin urmare, inhibarea A5-LOX este importantă în prevenirea și tratamentul diferitelor tulburări inflamatorii.

Xantin oxidaza(XO) catalizează oxidarea hipoxantinei în xantină și a xantinei în acid uric[5]. Inhibitorii XO blochează biosinteza acidului uric și, în consecință, reduc nivelurile de acid uric, precum și stresul oxidativ vascular. În timpul acțiunii catalitice a XO, se formează specii reactive de oxigen (ROS) și, prin urmare, XO joacă un rol patogenetic și în alte tulburări inflamatorii. În consecință, inhibitorii XO sunt importanți în tratamentul diferitelor tulburări inflamatorii însoțite de acțiunea catalitică a XO [2,5].

Hialuronidaza este o enzimă lizozomală care catalizează hidroliza mucopolizaharidelor, cum ar fi acidul hialuronic. În poliartrita reumatoidă, hialuronidaza degradează excesiv acidul hialuronic și îi reduce cantitatea și greutatea moleculară, producând simptome artritice [6]. Inhibarea degradării acidului hialuronic este critică și imperativă în controlul stărilor patologice mediate de hialuronidază[7].

În condiții inflamatorii, celulele imune sunt atrase de locul inflamației. În timpul reacțiilor de apărare și imunologice, NADPH oxidazele rezidente în celulele imune sunt activate și generează ROS în cantități mari, creând o explozie oxidativă [1, 8]. Cantitățile scăzute și moderate de ROS sunt benefice în diferite procese fiziologice. Cu toate acestea, supraproducția de ROS dereglează funcțiile celulare care, la rândul lor, îmbunătățesc starea inflamatorie [8,9]. Prin urmare, inhibarea exploziei oxidative induse de ROS este un potențial remediu pentru prevenirea și gestionarea bolilor mediate de inflamație.

În timpul fosforilării oxidative,radicali liberiinclusiv ROS se formează ca subproduse [10].Pe lângă metabolismul celular normal, există mulți alți factori care duc la formarea radicalilor liberi, iar dacă rata de generare a radicalilor liberi depășește rata de neutralizare, stresul oxidativ este creat și contribuie semnificativ la toate bolile inflamatorii. Deoarece antioxidanții sunt capabili să prevină formarea radicalilor liberi și să stingă radicalii liberi, un echilibru între antioxidanți și radicali liberi este esențial pentru a menține funcțiile fiziologice în mod corespunzător [8,11,12].

Meiul (Eleusine coracana(L.)Gaertn.) este cel mai important mei mic de la tropice și mai multe proprietăți terapeutice ale meiului au fost raportate anterior [13-17]. Cu toate acestea, pentru soiurile de mei care sunt cultivate și consumate în prezent în Sri Lanka, există o lipsă de dovezi științifice cu privire la proprietățile terapeutice.

și potențiale beneficii pentru sănătate pentru consumatori. În consecință, este imperativ să se studieze proprietățile antiinflamatorii și antioxidante ale soiurilor de mei din Sri Lanka și să se recunoască potențialul lor de a îmbunătăți starea nutrițională și de sănătate a consumatorilor. Prevalența bolilor mediate de inflamație și asociate stresului oxidativ este în creștere la nivel mondial, creând o cerere emergentă pentru surse noi de agenți antiinflamatori și antioxidanți [1, 2]. Având în vedere acest context, studiul de față s-a concentrat pe evaluarea soiurilor de mei din Sri Lanka pentru proprietățile antiinflamatorii in vitro în ceea ce privește A5-LOX, XO, hialuronidază, activități de inhibiție a izbucnirii oxidative și proprietăți antioxidante folosind diferite teste antioxidante. .

2. Materiale și metode

2.1.Colectarea și pregătirea probelor. Soiurile de mei care sunt recomandate pentru cultivare în Sri Lanka de către Departamentul Agriculturii, și anume, Ravi, Rawana și Oshadha, au fost colectate de la Institutul de Cercetare și Dezvoltare a Culturilor de câmp (FCRDI), Mahailuppallama, Sri Lanka. Aceste soiuri au fost cultivate în parcele experimentale din Zona Secătoare a Țării Joase, la FCRDI, Mahailuppallama, iar semințele au fost certificate de Serviciul de Certificare a Semințelor din cadrul Departamentului Agriculturii, Sri Lanka.

Semințele de mei au fost decorticate (TM 05C, Satake Corporation, Japonia), iar făinile din cereale integrale au fost obținute prin măcinare (Pulverisette 14, Fritsch, Germania) și trecerea printr-o sită de 0,5 mm. Făinurile de cereale integrale au fost extrase cu etanol și metanol separat. Făina integrală (100 g) a fost extrasă cu solventul (400 ml) peste noapte la temperatura camerei (28±2 grade) folosind un agitator magnetic și centrifugată la 4000 rpm timp de 20 min. Supernatantul a fost colectat separat, iar reziduul a fost reextras de două ori folosind aceleași condiții. Supernatanții au fost combinați și evaporați la sec sub presiune redusă la 40 de grade folosind un evaporator rotativ (R-114, Büchi Labortechnik AG, Elveția). Extractele fără solvenți au fost păstrate în recipiente de sticlă etanșe la grade-20 până când sunt utilizate pentru analiză.

2.2.Enzime, substanțe chimice și echipamente. Reactiv fenol Folin-Ciocalteu, clorură de aluminiu, 2,4,6-Tri({2-piridil)-s-triazină (TPTZ), 2,2'-azobis (2-amidinopropan) diclorhidrat (AAPH),2,2-difenil-1-picrilhidrazil (DPPH), quercetină,6-hidroxi{-2,5,7,8-tetrametilcroman{{19} }acid carboxilic (Trolox), acid etilendiaminotetraacetic (EDTA), sare de diamoniu 2,2’-azino-bis(3-etilbenzotiazolin{-6-acid sulfonic) (ABTS), fluoresceină,3-( Sare monosodică a acidului 2-piridil){-5,{6-difenil{-1,2,4-triazin-p,pdisulfonic

hidrat (ferozină), arahidonat 5-lipoxigenază, acid linoleic, baicaleină, xantin oxidază, xantină, alopurinol, hialuronidază, sare de sodiu a acidului hialuronic, p-dimetilaminobenzaldehidă, acid galic, acid tanic, dimetil sulfoxid și ialuronidază au fost achiziționate de la imbuprofoxid Sigma-Aldrich, MO, SUA. HBS* plus și HBSS au fost achiziționate de la Thermo Fisher Sci-entific Inc., Massachusetts, SUA. Zymosan a fost achiziționat de la Wako Pure Chemical Industries Ltd., Osaka, Japonia.

Luminol (3-aminoftalhidrazidă) a fost achiziționat de la Alfa Aesar GmbH & Co KG, Karlsruhe, Germania. Mediul de separare a limfocitelor a fost achiziționat de la MP Biomedicals, Inc., Ohio, SUA. Toate celelalte substanțe chimice și reactivi utilizați în experimente au fost de calitate ACS, HPLC și analitică. Pentru a determina capacitatea de absorbție a radicalilor de oxigen, a fost utilizat un cititor de microplăci cu fluorescență (SpectraMax-Gemini EM, Molecular Devices Inc., SUA). Pentru testele de chemiluminiscență, a fost folosit un luminometru (Luminoskan RS, Labsystems, Finlanda). Pentru toate celelalte biotestări, a fost utilizat un cititor de microplăci (Spectra-Max Plus384, Molecular Devices Inc, SUA).

2.3.Determinarea Conținutului Fenolic Total. Conținutul fenolic total (TPC) a fost determinat conform metodei Folin-Ciocalteu 【18】. Extractul de mei （20ul） a fost amestecat cu 110ul de reactiv Folin-Ciocalteu proaspăt preparat de 10 ori diluat și 70ul de soluție de carbonat de sodiu (10% g/v) și incubat la temperatura camerei (RT) timp de 30 min. Absorbanța a fost măsurată la 765 nm. Acidul galic a fost folosit pentru a reprezenta curba standard (y=0.0532x plus 0.0339;r{=0.9992), iar TPC a fost calculat ca mg echivalenți de acid galic (GAE) per 100 g de făină pe un uscat baza de greutate.

2.4. Determinarea conținutului total de flavonoide. Conținutul total de flavonoide (TFC) a fost determinat conform metodei colorimetrice cu clorură de aluminiu [19]. Extractul de mei (100ul) a fost amestecat cu soluție de clorură de aluminiu (2 procente g/v, 100ul), incubat timp de 10 minute la RT și absorbanța a fost măsurată la 415 nm. Quercetina a fost folosită pentru a reprezenta curba standard (y=0.0349x{-0.2091; r²=0,9974), iar TFC a fost calculat ca mg echivalenți de quercetină per 100 g de făină pe bază de greutate uscată.

2.5.Determinarea activității de eliminare a radicalilor DPPH. Capacitatea de a elimina radicalii DPPH a fost determinată conform metodei descrise de Blois [20]. Extractul de moale deget (50 ul) a fost amestecat cu 90 ul de metanol și 60 ul de soluție de DPPH (0,02 procente g/v) și incubat la RT în întuneric timp de 10 minute. Valorile de absorbție ale probei (As) și ale controlului (Ac) au fost măsurate la 517 nm. Trolox a fost folosit ca standard. Activitatea de captare a radicalilor DPPH ca procent de inhibiție a fost calculată utilizând ecuația (1). Valoarea IC a fost calculată folosind grafice doză-răspuns.

2.6. Determinarea activității de captare a radicalilor cationici ABTS. Capacitatea de a elimina radicalii cationici ABTS a fost determinată conform metodei descrise de Re și colab. [21] cu unele modificări. Soluția de radical cationic ABTS a fost preparată prin incubarea a 10 mg de ABTS în 2,5 ml de persulfat de potasiu la 37 grade C în întuneric timp de 16 ore și diluând de 7 ori cu soluție salină tampon fosfat 50 mM (pH 7,4). Extractul de mei (12,5 ul) a fost amestecat cu soluție salină tampon fosfat (147,5 ul) și soluție de radical cationic ABTS proaspăt preparată (40 ul) și incubat la RT în întuneric timp de 10 minute. Valorile de absorbție ale probei (As) și ale martor (Ac) au fost măsurate la 734 nm. Trolox a fost folosit ca standard. Activitatea de captare a radicalilor cationici ABTS ca procent de inhibare a fost calculată utilizând ecuația (2). Valoarea IC a fost calculată folosind grafice doză-răspuns.

2.7. Determinarea capacității de absorbție a radicalilor de oxigen (ORAC). ORAC a fost evaluat conform metodei descrise de Ou et al.[22] cu unele modificări. Soluțiile de fluoresceină (4,8 uM) și AAPH (40 mg/ml) au fost preparate în tampon fosfat 75 mM (pH 7,4). Extractul de mei (10 ul) a fost amestecat cu 40 ul de tampon fosfat și 100 ul de fluoresceină și incubat la 37 de grade timp de 10 minute. S-a adăugat AAPH(50ul) și dezintegrarea fluoresceinei a fost măsurată la lungimi de undă de excitare și emisie de 494 nm și, respectiv, 535 nm, la 37 de grade timp de 35 de minute la intervale de 1 min folosind un cititor de microplăci cu fluorescență. Tro-lox a fost folosit ca standard. Au fost înregistrate valorile zonei de sub curba (AUC) ale probei (AUC), martor (AUC) și Trolox (AUC-). Valoarea ORAC a fost calculată utilizând ecuația (3) unde conc. reprezintă concentrare. Rezultatele au fost exprimate ca mg echivalenți Trolox per 100 g de făină pe bază de greutate uscată.

2.8. Determinarea activității de chelare a ionilor feroși (FIC).. Capacitatea de a chela ionii feroși a fost determinată conform metodei descrise de Carter [23]. Extractul de mei (100ul) a fost amestecat cu 1 mM soluție de sulfat feros (20ul) și 40ul de apă distilată. Apoi, s-a adăugat soluție de ferozină 1 mM (40 ul) și s-a incubat timp de 10 minute la RT. Valorile de absorbție ale probei (As) și ale martor (Ac) au fost înregistrate la 562 nm. EDTA a fost folosit ca standard. Activitatea FIC ca procent de chelare a fost calculată utilizând ecuația (4).

2.9. Determinarea puterii antioxidante reducătoare ferice (FRAP). FRAP a fost determinat conform metodei descrise de Benzină și Szeto [24] cu unele modificări. Reactivul FRAP a fost preparat prin amestecarea a 300mM tampon acetat (pH 3,6), 20mM clorură ferică și 10mM TPTZ într-un raport de 10:1:1 și incubarea la 37 grade C timp de 10 minute. Extractul de mei (20 ul) a fost amestecat cu 30 ul de tampon acetat și 150 ul de reactiv FRAP proaspăt preparat, incubat la temperatura camerei timp de 8 minute și absorbanța a fost înregistrată la 600nm. Trolox a fost folosit pentru a reprezenta curba standard (y=0.17x plus 0,15;产{{=1.00), iar FRAP a calculat ca mg echivalent Trolox per 100 g de făină pe bază de greutate uscată.

2.10.Determinarea activității inhibitoare A5-LOX. A{{0}}activitatea inhibitoare a LOX a fost evaluată conform metodei descrise de Tappel [25] cu unele modificări. Extractul de mei (10ul) a fost amestecat cu 115ul de tampon fosfat de sodiu 100mM (pH 8,0) și 50ul de soluție A{5-LOX (5000U/ml) și incubat la RT timp de 10 min. Reacţia a fost iniţiată cu adăugarea a 25 ul de acid linoleic 0,08 mM. Modificarea absorbanței a fost înregistrată la 234 nm la intervale de 1 min timp de 10 min la RT și s-au înregistrat valorile vitezei maxime (Vmxk) ale probei (Vmaxs) și ale controlului (Vmaxc). Baicaleinul a fost folosit ca standard. A5-activitatea inhibitorie a LOX ca procent de inhibiție a vârstei a fost calculată utilizând ecuația(5).Valoarea ICs a fost calculată folosind grafice doză-răspuns.

2.11.Determinarea activității inhibitorii XO. Activitatea inhibitoare a XO a fost determinată conform metodei descrise de Lee și colab. [26] cu unele modificări. Extractul de mei (10ul) a fost amestecat cu 150ul de tampon fosfat de sodiu 50 mM (pH 7,4) și 20 ul de XO (0,15 U/ml) și incubat timp de 10 min la RT. Reacţia a fost iniţiată cu adăugarea a 20 ul de 0,1 mM xantină. Modificarea absorbanței a fost înregistrată la 295 nm la intervale min timp de 15 min la RT și au fost înregistrate valorile Vmax ale probei (Vmaxs) și control (Vmaxc). Alopurinolul a fost utilizat ca standard. Activitatea inhibitoare XO ca procent de inhibiție a fost calculată utilizând ecuația (6). Valoarea ICs a fost calculată utilizând grafice doză-răspuns.

2.12.Determinarea activității inhibitoare a hialuronidazei. Activitatea inhibitoare a hialuronidazei a fost evaluată conform metodei descrise de Sahasrabudhe și Dedhar [27] cu unele modificări. Extractul de mei (50ul) a fost amestecat cu 10ul de hialuronidază （8400U/ml） și incubat la 37 de grade timp de 10 minute. Enzima a fost activată prin adăugarea a 20 ul de clorură de calciu (12,5 mM) și incubarea la 37 de grade timp de 10 minute. Reacția a fost inițiată cu adăugarea de hialuronat de sodiu (50ul) și incubată la 37 grade C timp de 40 min. Apoi, s-au adăugat 10 ul de hidroxid de sodiu 0,9 M și 20 ul de borat de sodiu 0,2 M și s-au incubat la 100 de grade timp de 3 minute. După răcire la RT, s-au adăugat 50 ul de p-dimetilaminobenzaldehidă 67 mM şi s-au incubat la 37 de grade timp de 10 minute. Valorile de absorbție ale probei (As) și ale martor (Ac) au fost măsurate la 585 nm. Acidul tanic a fost folosit ca standard. Activitatea inhibitoare a hialuronidază ca procent de inhibiție a fost calculată utilizând ecuația (7).

2.13.Determinarea activităților de inhibiție a exploziei oxidative. Potențialele antiinflamatorii în ceea ce privește activitățile de inhibiție a izbucnirii oxidative în sângele uman întreg și neutrofilele polimorfonucleare izolate au fost determinate folosind testul de chemiluminiscență îmbunătățită cu luminol [28, 29] cu unele modificări. Experimentele au fost efectuate la Centrul Dr. Panjwani pentru Medicină Moleculară și Cercetare a Medicamentului, Centrul Internațional pentru Științe Chimice și Biologice, Universitatea din Karachi, Pakistan, iar institutul are autorizația etică pentru studiile asupra sângelui uman de la comitetul independent de etică, ICCBS, UoK . Nr:ICCB-S/IEC-008-BC-2015/Protocol/1.0.

2.13.1. Determinarea activității inhibitoare a exploziei oxidative în sângele uman întreg. Sânge uman (1 ml) a fost colectat aseptic prin puncție venoasă într-un tub heparinizat de la un voluntar sănătos, nefumător, care nu a luat niciun medicament sau suplimente mai mult de o săptămână și a fost diluat (diluție 1:20) cu HBS plus *(Hanks Balanced). Soluție de sare, care conține calciu și magneziu). Extractul de mei (25 ul) a fost amestecat cu sânge integral diluat (25 ul) și incubat la 37 grade C timp de 15 minute. Apoi, s-au adăugat 25 ul de zimosan opsonizat seric și 25 ul de luminol. Producția de ROS de explozie oxidativă a fost monitorizată timp de 50 de minute utilizând un luminometru cu scanări repetate la intervale de 30 s și timp de măsurare a punctelor de 1 s. Ibuprofenul a fost utilizat ca medicament standard. Procentul de inhibiție a fost calculat utilizând ecuația (8).

unde RLU este citirea luminometrului în termeni de unități de lumină relative (RLU) pentru control și RLU este citirea luminometrului în RLU pentru probă. Valoarea IC a fost calculată folosind grafice doză-răspuns.

2.13.2. Determinarea activității de inhibiție a exploziei oxidative în neutrofile polimorfonucleare izolate. Sânge uman întreg (10 ml) a fost amestecat cu volume egale de HBSS (soluție de sare echilibrată Hanks, fără calciu și magneziu) și mediu de separare a limfocitelor (LSM) și a permis eritrocitelor să se stabilească timp de 30 de minute la temperatura camerei. Apoi, plasma a fost așezată cu grijă pe LSM și centrifugata la 400 x g timp de 20 min la RT. Supernatantul a fost îndepărtat; celulele roșii din sângele din peleta rezultată au fost lizate prin amestecare cu apă deionizată rece, amestecate cu HBSS7 rece și centrifugate la 300 x g timp de 10 minute la 4 grade. Peleta a fost spălată de două ori, iar viabilitatea neutrofilelor polimorfonucleare rezultate a fost verificată utilizând metoda de excludere cu albastru tripan. Concentrația de celule a fost ajustată la 1 x 10 grade celule/ml. Neutrofilele polimorfonucleare izolate (25 山l) au fost amestecate cu extract de mei (25 ul) și incubate timp de 15 minute la 37 de grade. Apoi, s-au adăugat 25 ul de zimosan opsonizat în ser și 25 ul de luminol, iar producția de ROS de explozie oxidativă a fost monitorizată timp de 50 de minute folosind un luminometru cu scanări repetate la intervale de 30 de secunde și timp de măsurare a ls puncte. Ibuprofenul a fost utilizat ca medicament standard. Procentul de inhibiție a fost calculat utilizând ecuația (8).

2.14. Analize statistice. Datele fiecărui experiment au fost analizate statistic folosind software-ul IBM SPSS Statistics (versiunea 20), iar rezultatele au fost exprimate ca medie ± eroare standard (SE). Semnificația statistică a fost stabilită la un nivel de încredere de 95%. Analiza unidirecțională a varianței (ANOVA) și testul Tukey au fost utilizate pentru a determina diferențele dintre soiuri și extracte. Pentru analiza corelației a fost utilizat coeficientul de corelație al lui Pearson.

Clasificarea inflamației

Inflamație acută: caracterizată în principal prin roșeață, umflare, durere etc., adică inflamație compusă în principal din reacția sistemului vascular.

Inflamație cronică: în principal unele boli inflamatorii cronice, cum ar fi gastroenterita cronică, hepatita cronică, inflamația ginecologică recurentă și alte boli.

Cauza inflamației

Orice factor care poate provoca leziuni tisulare poate fi o cauză a inflamației, adică factorii inflamatori pot fi grupați în următoarele categorii:

(1) Factori biologici

Bacteriile, virusurile, micoplasmele, ciupercile, spirochetele și paraziții sunt cele mai frecvente cauze ale inflamației. Inflamația cauzată de agenții patogeni biologici se mai numește și infecție. Exotoxinele și endotoxinele produse de bacterii pot deteriora direct țesuturile; replicarea virală în celulele infectate duce la necroză celulară; anumiți agenți patogeni antigenici afectează țesuturile prin răspunsuri imune induse după infecție, cum ar fi infecțiile parazitare și tuberculoza.

2) Factori fizici

Temperatură ridicată, temperatură scăzută, substanțe radioactive, raze ultraviolete etc. și daune mecanice.

(3) Factori chimici

Substanțe chimice exogene, cum ar fi acidul puternic, alcalii puternici și terebentina. Substanțe toxice endogene, cum ar fi produșii de descompunere ai țesutului necrotic și metaboliții, cum ar fi ureea, acumulate în organism în anumite condiții patologice.

(4) Corp străin

Corpurile străine care pătrund în corpul uman prin diferite mijloace, cum ar fi diferite metale, resturi de lemn, praf în aer, suturi chirurgicale etc., pot provoca grade diferite de răspunsuri inflamatorii datorită antigenității lor diferite.

(5) Țesut necrotic

Cauze precum ischemia sau hipoxia pot provoca necroza tisulara, care este un potential factor inflamator. Benzile hemoragice congestive și infiltrarea celulelor inflamatorii la marginile infarctelor proaspete sunt ambele manifestări ale inflamației.

(6) Alergii

Atunci când răspunsul imun al organismului este anormal, acesta poate provoca un răspuns imun inadecvat sau excesiv, provocând leziuni ale țesuturilor și celulelor și ducând la inflamație. Cum ar fi rinita alergică, colita, urticaria, tuberculoza, glomerulonefrita și alte boli.

Antibioticele sunt bactericide și antiinflamatoare, utilizarea pe termen lung va distruge flora normală a corpului uman, va ucide bacteriile bune, va cauza dezechilibru florei intestinale, va provoca o varietate de disfuncție intestinală și reacții adverse și va provoca infecții secundare, reduce organismul. rezistenţă. În plus, antibioticele sunt metabolizate în cea mai mare parte de către ficat și rinichi, iar abuzul de antibiotice este cel mai probabil să afecteze funcția ficatului și rinichilor. Puteți acorda atenție cuvintelor „utilizați cu precauție la pacienții cu funcție hepatică și renală deficitară” din instrucțiunile tuturor medicamentelor antiinflamatoare. În plus, antibioticele pot crește și reacțiile alergice la medicamente. În ultimii ani, incidența ridicată a rinitei alergice și a astmului alergic este legată de abuzul de antibiotice.

Experimentele au arătat că extractul de Cistanche pipiensis bogat în echinacozidă are un efect bun de ameliorare asupra colitei; Cistanche glicozida K și piposida B au un efect inhibitor bun asupra secreției de oxid nitric în celule, arătând că efectul său antiinflamator bun.Cistancheeste un material medicinal chinezesc cu aceeași origine ca medicamentele și alimentele. Este unul dintre primele zece medicamente chinezești pe bază de plante din țara mea. Este o comoară din adâncurile deșertului și un tonic natural. Cistanche Cistanche are un istoric medicinal de aproape 2,000 ani. A fost înregistrat pentru prima dată în „Shen Nong’s Materia Medica”. În 2005, Cistanche a fost inclusă în „Farmacopeea Republicii Populare Chineze” ca material medicinal autentic. Cistanche a fost un bun tonic din cele mai vechi timpuri, fara nicio evidenta de toxicitate, ceea ce ii dovedeste pe deplin siguranta.